大多數(shù)情況下，純化的樣品會被稀釋。如果下游需要的樣品濃度比較高時，可能需要對樣品進(jìn)行濃縮。本身濃縮的方法如下。

　　1）吹干濃縮法：將蛋白溶液裝入透析袋內(nèi)，放在電風(fēng)扇下吹。此法簡單，但速度慢，且溫度不能過高，不要超過15℃。

 

　　2）透析袋濃縮法：利用濃縮蛋白質(zhì)溶液是應(yīng)用較廣的一種。將要濃縮的蛋白溶液放入透析袋（無透析袋可用玻璃紙代替），結(jié)扎，把高分子聚合物如聚乙二醇（碳蠟）、聚乙烯吡咯、烷酮等或蔗糖撒在透析袋外即可。也可將吸水劑配成30%-40%濃度的溶液，將裝有蛋白液的透析袋放入即可。吸水劑用過后，可放入溫箱中烘干或自然干燥后，仍可再用。

　　主要用于更換蛋白質(zhì)的緩沖液，得有透析袋。不需要特殊的儀器。一般用得是PEG20000進(jìn)行實(shí)驗(yàn)，簡單，快速，對蛋白沒什么影響。

 

　　美國光譜醫(yī)學(xué)透析袋的使用前處理：（試驗(yàn)要求不高的可以使用簡易處理方法：在沸水中煮沸10分鐘左右即可使用）

　　1.把透析袋剪成適當(dāng)長度的小段。

 

　　2.在大體積的2%碳酸氫鈉和EDTA中將透析袋煮沸10分鐘。

 

　　3.用蒸餾水*清洗透析袋。

 

　　4.放在EDTA中將之煮沸10分鐘。

 

　　5.冷卻后，存放于4度，必須確保透析袋始終浸沒在溶液內(nèi)。從此時起取用透析袋是必須戴手套。

 

　　6.用前在透析袋內(nèi)裝滿水然后排出，將之清洗干凈。